تحقیق بررسی فاکتورهای موثر در کمیت عامل اشک آور پیاز ۱۶ ص
تحقیق بررسی فاکتورهای موثر در کمیت عامل اشک آور پیاز ۱۶ ص
لینک دانلود و خرید پایین توضیحات
دسته بندی : وورد
نوع فایل : word (..doc) ( قابل ویرایش و آماده پرینت )
تعداد صفحه : ۱۵ صفحه
قسمتی از متن word (..doc) :
زمان نهفتگی و کولتیوار و مدت انبارداری بر تعین کمیت عامل اشک آور پیاز تاثیر می گذارد
خلاصه : عامل اشک آور(LF ،Z,E پروپانتیال اکسید گوگرد) یک محصول مستقیم هیدرولیز یک پروپنیل سیستئین سولفوکسید ۱- prencsoست ودرزمانی که در غلظتهای بالا وجود دارند بر طعم پیاز اثر می گذارد. جهت ارزیابی کردن عامل اشک آور به عنوان یک فاکتور موثر در کیفیت طعم پیاز، دو کولتیوار که یکی در گلخانه پرورش یافته و دیگری پیازهایی بودند که برای مدت ۴ماه در دمای مثبت ۳ و منفی ۱درجه سانتیگراد و رطوبت نسبی ۷۰ درصد ذخیره شدند، ارزیابی شدند. پیازها در فاصله های ذخیره سازی ماهانه برای توسعه عامل اشک آور در پیازهای خیس شده به دنبال یک زمان نهفتگی دو دقیقه ای ارزیابی شدند. زمانیکه عامل اشک آوربا مقادیر هیدرولیز ۱-prencso مقایسه شد ، ما دریافتیم که عامل اشک آور به طور شدیدی درنظر گرفته نشده است. رابطه عامل اشک آور (LF) ۱-prencso نیز بین انوع کولتیوارها در طول زمان انبارکردن متغیر می باشد. از آنجائیکه granex 33 برای دوره های طولانی تر ذخیره سازی شد مقدار عامل اشک آور اندازه گیری شده در دو دقیقه به طور نزدیکی مقدار ۱-prencso هیدورلیز شده را منعکس کرد و نشان داد عامل اشک آور dehydrator 3 هرچند به طور همسانی صرف نظر از زمان ذخیره سازی درنظر گرفته نشده است. ازاینرو دومین آزمایش با به کارگیری تک تک پیازهای ۲ نوع کولتیوار در جهت تعیین زمان نهفتگی برای تعیین کمیت LF بود. عامل اشک آور حد اکثر در میان پیازها به طور کلی ۵تا ۱۰ ثانیه بعد از خیس شدگی بافت برای آب زدا . بعد از ۱۵ تا ۳۰ ثانیه برای sweet vidalia آشکار سازی شد.
مقدار عامل اشک آور تعیین کمیت شده بین ۵ ثانیه تا دو دقیقه به طور خطی برای ۹پیاز از ۱۰ پیاز dehydrator کاهش یافت اما این روش برای sweet vidalia کمتر ظاهر شد. یکسان بودن زمان نهفتگی LF برای همه کولتیوارها ممکن نیست. این اطلاعات یک رابطه پیچیده ای درمیان و در داخل کولتیوارپیاز برای هیدرولیز ۱-prencso و شکل گیری عامل اشک آور در پیازهای خیس شده را نشان میدهد.
پیازها (Allium cepal.) از ابتدا به خاطر طعم هایشان مصرف میشوند. در زمان بریده شدن یا آسیب دیدن بافت طعم خاص پیاز توسعه می یابد. آنزیم آلیناز که در واکوئل قرار دارد برای هیدرولیز کردن پیش ماده های طعم آن آزاد میشود و مجموعا به عنوان اس آلکنیل ال سیستئین سولفوکسیدها شناخته شده اند و در سیتوپلاسم قرار دارند. سه پیاز به طور طبیعی به وجود آمده ترانس مثبت و منفی یک پروپنیل –ال سیستئین سولفوکسید ۱- prencso و مثبت و منفی اس متیل ال سیستئین سولفوکسید ( MCSO ) و مثبت و منفی اس پروپیل ال سیستئین سولفوکسید میباشند. محصولات اولیه واکنش وابسته به هیدرولیز اسیدهای سولفنیک هستند که به تولید کردن عامل اشک آور و تیوسولفیناتهاو آمونیاک و اسد پیروویک ادامه میدهند. تیوسولفیناتها مسئول ویژگیهای طعم مختلف مرتبط با پیاز های خام در زمان مصرف شدن هستند. تیوسولفیناتها دوباره در طول زمان مجددا شکل می گیرند و دی سولفیدها و دیگر ترکیبات s را تولید میکنند. پروپانتیال s-oxide یا عامل اشک آور حاصل از هیدرولیز یک پروپنیل سیستئین سولفوکسید میباشند و عامل سوزش دهان و گرمای مربوط با مصرف پیاز بصورت محلول است. ویژگیهای حسی حاصل از عامل اشک آور میتواند شدید باشد و اگر غلظت ۱-prenso بالا باشد. بسیاری از روشها برای تعیین کمیت و کیفیت عامل اشک آور گزارش شده بودند. اولین تلاشها جهت جداسازی ترکیبات فرارهای پیاز از جمله عامل اشک آور از تقطیر بخار و جداسازی های کروماتوگرافی استفاده کردند. هرچند این روشها کیفی بودند تا اینکه کمی باشند. ساگیر و دیگران یک روش کروماتوگرافی گاز را با به کار گیری یک استاندارد داخلی جهت تعیین کمیت مونو سولفیدهاو دی سولفیدها در فاصله های پیاز توسعه دادند که بعدا ثابت کردند که جهت به دست آوردن عامل اشک آور زمان اجرای طولانی داشتند. روش دیگر تعیین کمیت عامل اشک آور از استخرا ج هگزان و جذب طیف نور سنجی در ۲۵۴nm استفاده کردند. هرچند چون دیگر ترکیبات نیز در هگزان استخراج شدند و در ۲۵۴nm جذب شدند. ، این روش نادرست برای تعیین کمیت عامل اشک آور ثابت شد. Tewari و bandyopadhyay یک روش کروماتو گرافی لایه نازک را برای تعیین کمیت عامل ابداع کردند توسعه دادند اما کروماتوگرافی لایه نازک یک فرایند کند و مشکلی است .با به کار گیری کروماتوگرافی لایه نازک عامل اشک آور مذکور به طور بیشینه در عرض دو دقیقه از خیش شدگی بافت تولید و به سرعت پس از آن ناپدید شد. کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا میتواند بسیاری از تیوسولفیناهای پیاز را جدا کند اما عامل اشک آور را تعیین کم
یت نمیکند. به کار گیری کروماتوگرافی گاز و جداسازی طیفی جرمی و دماهای دریچه، و ستون تزریق داغ باعث میشود تا مواد شیمیایی پیاز دوباره ایجاد و مصنوعات را تولید کند. هر چند با به کارگیری دماهای پایینتر درطول تزریق و جداسازی کروماتوگرافی گاز عامل اشک آور به طور درستی آشکار سازی شد اما تعیین کمیت نگردید. Schmidt و دیگران در۱۹۹۶ جهت بهینه سازی و تعیین کمیت عامل اشک آور با به کارگیری یک استاندرد داخلی یک روش سریع کر.ماتوگرافی را توسعه دادند وتحقیق کردند. آنها در زمان ارزیابی اولیه شان به دنبال یک زیان نهفتگی خیس شدن دو دقیقه ای، برای آشکار سازی حد اکثر عامل اشک آور را گزارش کردند. بیشتر دو دقیقه عامل اشک آور کاهش پیدا کرد و آنها حدس زدند که این به تبخیر، هیدرولیز یا کاهش بود. تکنیک اخیرا منتشر شده برای تحلیل کردن تیوسولفینات های پیاز و عامل اشک آور از استخراج مایع بحرانی استفاده کردند. هرچند آشکار سازی عامل اشک آور به علت فراریت آن و حبس شدن غیر موثر در مهره های شیشه ای جزئی بود. از آنجائیکه کاربرد روش schmidt ظاهرا معتبر ترین و سریعترین روش برای تعیین کمیت عامل اشک آور است، مطالعه با به کارگیری این روش جهت ارزیابی تغییرات عامل اشک آور (که ممکن است قبل و درطول ذخیره سازی پیاز با به کار گیری دو کولتیوار می باشد صورت گرفت. هرچند زمانیکه عامل اشک آور با مقدار هیدرولیز شده ۱-prencso در خیس شدگیها مقایسه شد ، یک مسئله ذاتی درزمان نهفتگی ظاهر شد. دومین مطالعه جهت تعیین کردن زمان آشکار سازی حد اکثر عامل اشک آور در پیاز های خیس شده و رابطه آن با ۱-prencso هیدرولیز شده صورت گرفت.
روش انجام مطالعه
آزمایش ۱: دو نوع کولتیوارپیاز با نور کم ، dehydrator 3 و(granex 33) بر اساس تغییرات طعم دوره گزارش شده قبلیشان در طول دوره انبار سازی انتخاب شدند. دردسامبر ۱۹۹۷ هر کولتیوار با س.بسنرتی Fafard 3-B کاشته شدند و بر اساس نیاز آبی شان آبیاری شدند و با محلول مغذی ۲۰N-20P-20K هر ۷تا ۱۰ روز کود داده شدند.نهالها با دماهای ۲۸درجه سانتیگراد درروز ۱۶ درجه سانتیگراد درشب برای هفت و نیم هفته قبل از پیوند داده شدن
در جعبه های رشد که حاوی fafrad-3-B میباشد درگلخانه روییدند. ۱۶ گیاه ازهر کولتیواردرحدود۴۰ جعبه به ابعاد ۱۴*۴۶*۴۶ سانتی متری با فاصله ۱۰ سانتی از مرکز کاشته شدند. در حدود ۱۰۰ میلی لیتر از یک محلول هوگلند و آرنون پر قدرت به طور هفتگی برای هرگیاه به کار رفت تا پیازها دوباره بداشت شدند. درسرتاسر آزمایش گیاهان مطابق نیاز آب داده شدند. پیازهای هر کولتیواراز ۵ تا ۱۰ می ۱۹۹۸ در زمانیکه بیش از ۵۰ درصد از گیاهان برگ داشتند برداشت شدند. اندازه و میزان رسیدگی پیاز مشابه با پیازهای روییده در مزرعه بود. گیاهان از ریشه کنده شدند و در جعبه هایی برای چندین روز قرار داده شدند. زمانیکه برگها پیر و قهوه ای شدن آنها را بهراه ریشه ها، خارج کردند و پیازها در کیسه های توری قرار دارند و جهت خشک شدن برای ۷روز درگلخانه آویزان شدند. درحدود ۱۸ پیاز یکنواخت از هر کولتیوارانتخاب شد و هر کدام ۱۶ کیسه توری قرار داده شدند. قبل از انبار کردن، از هر کولتیوار، ۴ نمونه ۱۰ لایه ای را برای تحلیل اولیه کنار گذاشند. کیسه ها ی ۱۸ پیازی باقیمانده در انبار سرد شده با به کار گیری یک طرح بلوک شکافی با ۴ مانع قرار داده شدند. بلوکها نواحی مختلفی از خنک کننده بودند و کولتیوارنمودارهای اصلی و ماه های ذخیره سازی نمودارهای فرعی بودند. کلیه کولتیواربرای ۴ ماه ذخیره شدند. در فاصله های ماهانه ، ۴کیسه پیاز از هر کولتیوارازانبار درآمدند و قبل از آنالیز بمدت ۲۴ ساعت در درجه حرارت اتاق قرار دارند. ۱۰ پیاز یکنواخت سالم از هر کولتیواراز هر کیسه برای هیدرولیز ۱-prencso و تعیین کمیت عامل اشک آور به دنبال خیس شدگی پیاز انتخاب شدند. قبل از آنالیز هر یک از ۱۰ پیاز ازبالا به پایین نصف شدند و ۱۰ نیمه با یک تک نمونه ترکیب شدند. نیمه های از یک گروه جهت تعیین کمیت مقدار ۱-prencso سالم قبل از خیس شدگی بافت بر طبق روش کوپسل مورد استفاده قرار گرفتند . نیمه دیگر جهت تعیین مقدار ۱-prencso هیدرولیز شده بر طبق لانکاستر مورد استفاده قرار گرفت. تکه های نازک ۱۰ پیاز با یک فشار بادی عصاره گیری شدند و نمونه ای از مقدار زیاد ۰.۵ میلی لیتری بعد از نهفتگی دو دقیقه ای برداشته شد و فورا در ۱۰۰سی سی محلولی که ۱۲ حجم متانول در برابر ۳ حجم آب کافت قرار داده شده تا واکنش آنزیمی متوقف گرد.به هر نمونه عصاره یا متانول ۱۰.۵ میلی لیتری ، اس متیل گلوتاتیون و گاما ال گلوتامیل ال اسید گلوتامیک و مثبت منفی اس بوتیل ال سیستئین سولفوکسید به عنوان استانداردهای داخلی اضافه شدند. ازاینرو نمونه ها برای تعیین کمیت
